細(xì)胞培養(yǎng)板依底部形狀的不同可分為平底和圓底(U型和V型);培養(yǎng)孔的孔數(shù)有6、12、24、48、96、384、1536 孔等;根據(jù)材質(zhì)的不同有Terasaki板和普通細(xì)胞培養(yǎng)板。具體選擇時根據(jù)培養(yǎng)細(xì)胞的類型、所需培養(yǎng)體積及不同的實驗?zāi)康亩ā?/p>

　　(1)平底和圓底(U型和V型)培養(yǎng)板的區(qū)別和選擇：

　　貼壁細(xì)胞一般用平底培養(yǎng)板。懸浮型細(xì)胞的培養(yǎng)一般用V型。

　　U型培養(yǎng)板亦多用于培養(yǎng)懸浮型細(xì)胞 。V型培養(yǎng)板有時用做免疫學(xué)血凝集的實驗。

　　不同型狀的板子自然有不同用途。平底的什么類型的細(xì)胞都可用﹐但當(dāng)細(xì)胞數(shù)目較少﹐如做克隆時﹐就用96孔平底板﹐另外﹐做MTT等實驗時﹐無論貼壁和懸浮細(xì)胞﹐一般均用平底板。至于U或V型板﹐一般在某些特殊要求時才使用。如在免疫學(xué)方面﹐當(dāng)做兩種不同淋巴細(xì)胞混合培養(yǎng)時﹐需要二者相互接觸以刺激﹐因此﹐一般需要U型板﹐因細(xì)胞會由于重力的作用而聚集在一個很小的范圍內(nèi)。V型板的用途更少﹐一般用于細(xì)胞殺傷實驗時﹐為了使效靶細(xì)胞緊密接觸﹐常使用V型板﹐但這種試驗也可用U型板替代(加入細(xì)胞后﹐低速離心)如果是養(yǎng)細(xì)胞的話，通常是選用平底的， 另外要特別注意材質(zhì)， 標(biāo)示"Tissue Culture (TC) Treated"就是養(yǎng)細(xì)胞用的。

　　圓底的好像沒聽說過拿來養(yǎng)細(xì)胞。 圓底的通常是拿來做分析， 化學(xué)反應(yīng)， 或是保存樣品用的， 因為圓底比較好將液體吸得干凈，如果用平底的就不好吸了。

　　(2)細(xì)胞培養(yǎng)常見問題與解答

　　問：我看到培養(yǎng)板有4、6、12、24、48、96孔幾種規(guī)格 ，但不知道到底什么實驗用哪種規(guī)格。

　　答：要根據(jù)你具體的實驗要求，流式一般用6孔，MTT一般用96孔，細(xì)胞爬片一般用24孔等，要具體根據(jù)你實驗來定。

　　問：請問哪位高手知道Terasaki板是什么培養(yǎng)板，與普通細(xì)胞培養(yǎng)板有什么區(qū)別?

　　答：Terasaki plate主要是用于晶體學(xué)研究，產(chǎn)品設(shè)計便于對晶體的觀察與結(jié)構(gòu)分析。有兩種sitting 和handing drop兩種方法，兩種方法應(yīng)用產(chǎn)品的外形結(jié)構(gòu)也不同。材料上選擇crystal class polymer ，特殊的材料有利觀察晶體結(jié)構(gòu)。

　　細(xì)胞培養(yǎng)板主要是PS材料。材料是treated sufface。便于細(xì)胞貼壁生長與伸展。當(dāng)然還有浮游細(xì)胞的生長材料，同時還有l(wèi)ow binding surface，有關(guān)更多實驗材料上的應(yīng)用與對材料的選擇。

　　問：我想測吸光度用酶標(biāo)儀，用多孔細(xì)胞培養(yǎng)板行嗎?請問酶標(biāo)板 多孔細(xì)胞培養(yǎng)板有什么區(qū)別?

　　答：用多空細(xì)胞培養(yǎng)板測吸光度肯定可以拉，我們經(jīng)常用它來做樣品的蛋白定量和MTT檢測。

　　區(qū)別：酶標(biāo)板一般要比細(xì)胞培養(yǎng)板貴，細(xì)胞板主要做細(xì)胞培養(yǎng)，但也可以用來測蛋白濃度;酶標(biāo)板包括包被板和反應(yīng)板，一般不能用做細(xì)胞培養(yǎng)，它主要做免疫酶聯(lián)反應(yīng)后的蛋白檢測，它需要更高的要求還需要特定的酶標(biāo)工作液。常用不同培養(yǎng)板的孔底面積及推薦加液量：不同孔板所加培養(yǎng)液的液面都不宜太深，一般在2-3mm范圍，結(jié)合不同孔的底面積就可算出各培養(yǎng)孔的適宜加液量。若加液量過多會影響氣體(氧氣)交換，而且在搬動過程中易溢出造成污染。具體所加細(xì)胞密度依實驗的目的不同靈活掌握。

　　(3)細(xì)胞培養(yǎng)板的密閉和污染問題

　　細(xì)胞培養(yǎng)板的加樣和操作：細(xì)胞培養(yǎng)板在進(jìn)行細(xì)胞操作時同樣遵循嚴(yán)格無菌的原則，各項操作要保證規(guī)范、科學(xué)，不對細(xì)胞的生長造成額外的影響。這其中常見的問題就是如何保證加樣后細(xì)胞的均勻和盡量減少換液對細(xì)胞生長狀態(tài)的影響。

　　問：96，24孔培養(yǎng)板或培養(yǎng)皿的蓋子都很松，這樣是方便了透氣，但是細(xì)菌、霉菌等污染物會不會也隨著溜進(jìn)去呢?

　　答：1.蓋子很松，屬于半開放培養(yǎng)，這樣的目的是透氣(實際上是為了使培養(yǎng)皿外的co2能夠與培養(yǎng)皿充分交換，維持培養(yǎng)基的pH值)。

　　2.凡事有利必有弊，這樣當(dāng)然增加了污染的可能性。此外這樣還會使培養(yǎng)皿內(nèi)的液體蒸發(fā)，這對于定量的藥物來說就顯得值得注意了。所以以下二條措施是必須的a培養(yǎng)箱內(nèi)空氣必須清潔(定期紫外線照，酒精擦洗，盡量少開關(guān)培養(yǎng)箱)b培養(yǎng)箱內(nèi)的濕度必須始終保持為100%(培養(yǎng)箱內(nèi)放置無菌蒸餾水的水槽)。

　　就好像培養(yǎng)皿，也是一個蓋倒扣的容器，也不會污染。主要是因為蓋子“L”型邊緣產(chǎn)生氣流負(fù)壓的緣故，灰塵上面才附著有微生物，而氣流攜帶的灰塵是無法通過產(chǎn)生負(fù)壓的蓋邊緣的。而透氣作用只是通過空氣的擴(kuò)散，不會產(chǎn)生氣流，所以只會透氣不會透菌。

　　我使用24孔板，在其中的某些孔中有操作(在超凈臺內(nèi))，而其它孔中還有細(xì)胞要培養(yǎng).我很擔(dān)心這樣會污染，不知道要注意什么?大家不知道有什么好的建議。

　　使用前綜合考慮一下，充分使用所以的孔;如果只需要使用少數(shù)的孔可以只用一邊的，其余用蓋子蓋住，我習(xí)慣于先用右側(cè)的孔(右手加樣方便)。

　　其實自己感覺只要注意無菌操作，一般是不會污染的。操作時用幾塊玻片把板子一側(cè)墊高，不要把蓋子全打開，一般沒問題。

　　(4)細(xì)胞分布不均及解決辦法

　　問：我的細(xì)胞接種培養(yǎng)板，細(xì)胞總是聚集在周邊部分，該如何處理啊?我看園子里有的戰(zhàn)友的細(xì)胞卻是聚集在中間，是不是板子的質(zhì)量問題啊?

　　答：請問你的細(xì)胞是如何混勻的?是滴管吹打還是振蕩培養(yǎng)板?如果是后者，而且是轉(zhuǎn)圈搖勻的話，很有可能由于離心力的作用使細(xì)胞甩到周邊部分，導(dǎo)致細(xì)胞中間少，四周多!自己可是試試!

　　周邊一般是相對會多一點，但是中間的數(shù)量也不會很少啊~~ 鋪板的時候我也沒有特異去振蕩培養(yǎng)板。

　　大概是板子的質(zhì)量問題吧或者是不是鋪板時候的細(xì)胞密度太低了?我用的corning的板 。

　　一個好辦法：在你培養(yǎng)種板之前，把培養(yǎng)板放入培養(yǎng)箱里進(jìn)行幾個小時的飽和后再取出，種入細(xì)胞時力量要輕，可采取用滴頭在培養(yǎng)板孔的側(cè)面慢慢加入讓細(xì)胞懸液流入板孔中，培養(yǎng)的細(xì)胞基本是均勻生長。記住千萬不要用振蕩器振蕩，否則你的細(xì)胞就會想你說得那樣聚積在一起。

　　我今天把培養(yǎng)板放入培養(yǎng)箱里幾個小時，適當(dāng)?shù)陌鸭?xì)胞密度加大了一下，另外多加了一點培養(yǎng)液，今晚看細(xì)胞鋪的挺好的。我認(rèn)為有兩種可能解決你問題的辦法:1.加入前吹打均勻;2.從多孔板側(cè)邊或底邊緩慢加入。

　　問：我在做原代培養(yǎng)時也遇到過這種情況，我一直以為培養(yǎng)皿鋪膠不均勻會導(dǎo)致這種現(xiàn)象，因為混勻的血管段加入到培養(yǎng)皿中時，在相差顯微鏡下血管段均勻分布在培養(yǎng)皿中，24h后貼壁的血管段就是周邊多，中間相對少些。下次我要試試hkqu戰(zhàn)友的方法看能否改變這種現(xiàn)象。

　　答：這種現(xiàn)象很正常呀，不知你仔細(xì)觀察過沒有，孔直徑愈小，這個現(xiàn)象越明顯，我試過，24、96孔板這種現(xiàn)象不可避免，因為液體的附壁使得孔內(nèi)培養(yǎng)液不是成一個液平面，而是周邊高，就像凹鏡一樣，而使用這兩種孔板由于需要加干預(yù)等原因而不能加足量培養(yǎng)液，使得細(xì)胞隨培養(yǎng)液一起出現(xiàn)“邊集”現(xiàn)象，如果為了使孔中央也有均勻細(xì)胞而增加接種細(xì)胞數(shù)量的話，這要看你需要觀察何種指標(biāo)，如果是MTT ，免疫組化的話會因為細(xì)胞成層而影響結(jié)果。

　　(5)6孔板接種和換液問題：

　　問：我的細(xì)胞傳代很正常，但一種到六孔板里(不管加藥和對照)，總有兩三個孔(隨機)細(xì)胞長得不好，很小，像破碎了。有人遇到過這種情況嗎?到底是啥原因呢?請各位指點

　　答：可能跟你加液的溫度有關(guān)。如果你細(xì)胞剛剛拿出來換液加液，培養(yǎng)基也是從4度冰箱拿出來不久，很容易細(xì)胞就會凍死了。建議你把培養(yǎng)基先在培養(yǎng)箱里邊孵育15min先。

　　另外，跟你細(xì)胞的生長狀態(tài)也有關(guān)。加藥之前的細(xì)胞可以用高點的血清濃度培養(yǎng)。保證細(xì)胞狀態(tài)良好。

　　或者放在37度水浴鍋里孵育也可以，或者是培養(yǎng)板本身的問題，你再換換其它培養(yǎng)板試試看。再有可能就是細(xì)胞狀態(tài)問題了，種板時的血清濃度調(diào)高試一下

　　問：近幾天，我用六孔培養(yǎng)板接種細(xì)胞，培養(yǎng)24小時后更換培養(yǎng)基，在更換培養(yǎng)基之前，顯微鏡觀察到細(xì)胞貼壁，狀態(tài)非常的好，更換了培養(yǎng)基后，立即用顯微鏡觀察，發(fā)現(xiàn)每個孔中都近乎有一半的細(xì)胞表現(xiàn)出近乎死亡的狀態(tài)。細(xì)胞變得非常小，產(chǎn)生大量的碎片，而另一半的細(xì)胞一切正常，異常細(xì)胞與正常細(xì)胞之間存在一條分水嶺，上半個圓是好的，下半個圓就不好，這是怎么一回事?

　　答：你可以看一下是不是培養(yǎng)板沒放水平。有一回我也出現(xiàn)過這種情況。

　　你的培養(yǎng)液如何，如果培養(yǎng)液過期，細(xì)胞就不會貼壁。換一點新配制的培養(yǎng)液試一試。

　　我也經(jīng)常碰到，我想可能是板的問題，換一個牌子的板或換用培養(yǎng)瓶就沒問題了。

　　不知樓主所需換液的培養(yǎng)板多不多，換培養(yǎng)基的時候如果沒有注意風(fēng)機的影響，特別是所需換液的培養(yǎng)板很多時，容易使細(xì)胞因風(fēng)吹失水而干縮破裂。如果如此，換液時應(yīng)該逐個培養(yǎng)板進(jìn)行，別怕浪費吸管，注意操作的效率!

　　(6)24孔板接種問題：

　　問：把細(xì)胞消化接種到24孔板之后，已經(jīng)四天了，老是每孔的中間部分長不滿，每天換液時都用PBS 清洗，第二天換液時都出現(xiàn)同樣的情況，每孔的邊緣長的很好，中央大量死細(xì)胞?

　　答：我是選擇孔內(nèi)鋪蓋玻片，在玻片上種植。每次換液都用PBS洗，必要的步驟嗎?另外，也有可能和細(xì)胞種類有關(guān)或者和培養(yǎng)液有關(guān)?

　　應(yīng)該是培養(yǎng)液可能加的太少了。由于表面張力的作用，培養(yǎng)板的邊緣液體會向上走，造成培養(yǎng)液面呈現(xiàn)一個凹面(就像量筒的液體凹面一樣)，中央的細(xì)胞正好在凹面的低處，培養(yǎng)液少，細(xì)胞的營養(yǎng)不夠，甚至干涸掉，空氣中的氧氣也會造成損傷，即使有增值過來的細(xì)胞也會死掉。

　　個人經(jīng)驗認(rèn)為這是物理問題:24孔板小，細(xì)胞接種進(jìn)去后是很難搖均勻的，結(jié)果導(dǎo)致細(xì)胞重貼壁后呈現(xiàn)四周密中間稀的狀況.至于中間較多死細(xì)胞，如果是懸浮狀的話，也一樣是物理問題。接種后比較粗暴的碰撞，似乎對搖均勻細(xì)胞有一定效果.

　　同時你所說的細(xì)胞周圍密而中間稀疏，大約有如下原因：

　　1.培養(yǎng)液加得太少。主要是由于液體張力的問題。

　　2.細(xì)胞接種后震蕩太厲害了。由于離心力作用導(dǎo)致細(xì)胞分布到周圍。

　　細(xì)胞分布均勻與否有一點很關(guān)鍵，即每種細(xì)胞是有個體差異的，別人的細(xì)胞操作不一定適合于你.所以要靠自己摸索，且找出專屬于自己細(xì)胞的一套規(guī)律，有如下經(jīng)驗：

　　1.所有待接種的細(xì)胞懸液在種板前一定要用吸管混勻。

　　2.按資料記載，24孔板的液體量為1ml，個人也覺得1ml的量足矣。

　　3.接種時，要慢慢加樣，且記得輕微旋轉(zhuǎn)槍頭，這樣做對細(xì)胞均勻分布有一定效果。

　　4.接種后直接放入培養(yǎng)箱讓細(xì)胞適應(yīng)培養(yǎng)板這個新的環(huán)境，個人認(rèn)為沒有必要在室溫放置一段時間。

       注：僅供參考！